Contribución al conocimiento de los Lepidoptera de España con la descripción de cuatro nuevas especies para nuestra fauna y otras citas de interés (Insecta: Lepidoptera)

Contribution to the knowledge of the Lepidoptera of Spain with the description of four new species for our fauna and other interesting records. (Insecta: Lepidoptera)

Introducción

La fauna de la Península Ibérica en general y de España en particular, no deja de sorprendernos con nuevas aportaciones a su destacada biodiversidad, demostrando ser una de las regiones europeas de mayor riqueza. Es evidente que los muestreos realizados son aún insuficientes, quedando todavía mucho trabajo por realizar, sobre todo localizando nuevos biotopos, pero los resultados poco a poco arrojan mayores conocimientos y nuevas especies por descubrir. Este es el caso del presente artículo, en el que se han analizado colecciones particulares y revisados los fondos de Instituciones científicas, lo que nos ha permitido detectar la presencia en nuestro país de diez nuevas especies, de las que cuatro son nuevas para la Ciencia. Por su interés, se aporta también la primera cita para la Península Ibérica de Coleophora texanella Chambers, 1878, especie ya citada anteriormente de la isla de Menorca, en las islas Baleares (VALLHONRAT et al., 2010), por lo que constituye la segunda cita para España. Así mismo se describe de la provincia de Cádiz, la hembra de Taleporia improvisella (Staudinger, 1859), especie endémica de España, de la que únicamente se conocía, hasta la fecha, el macho.

Material y métodos

El material utilizado para el estudio se ha obtenido mediante muestreos nocturnos con trampas de luz actínica distribuidas en los biotopos apropiados y disponiendo de las autorizaciones de las diferentes regiones afectadas. Para su identificación nos hemos basado en el examen comparativo de los caracteres morfológicos externos y, sobre todo, en el análisis de la estructura genital de los ejemplares. La preparación de los órganos genitales se ha efectuado siguiendo a ROBINSON (1976), con modificaciones. Se han utilizado los microscopios Leica DMLB, Leica MZAPO, NIKON Eclipse E400 y las cámaras digital Leica DFC550, NIKON D3100 y SONY α100 DSLR-A100K con objetivo AF 100 MACRO 1:2,8 (32), e igualmente para el retoque fotográfico, el programa de Adobe Photoshop ©.

Abreviaturas

E. España

JG Javier Gastón

MNCN Museo Nacional de Ciencias Naturales, Madrid, España

P. Portugal

prep. gen. Preparación de genitalia

Resultados

PSYCHIDAE

Taleporia improvisella (Staudinger, 1859) (Figs. 1, 22)

Talaeporia improvisella Staudinger, 1859. Stettin. ent. Ztg., 20(7-9): 234

LT: Granada, ESPAÑA

Material estudiado: 1 ♀, ESPAÑA, CÁDIZ, Benalup, dehesa “Las Cruces”, a 90 m, 14-IX-2015, J. Gastón leg. y coll., prep. genit. 7936JG,

Descripción de la hembra (fig. 1): Envergadura, 19 mm, (n = 1). Cabeza bien desarrollada con pelos escamiformes de color ocre. Palpos labiales de mediano tamaño, rectos, ligeramente inclinados hacia arriba en su primer segmento que se presenta densamente poblado de largos pelos de color ocre-amarillento con sus extremos algo más oscuros. Antenas filiformes recubiertas de pequeñas cerdas de color ocre oscuro con artejos muy cortos. Tórax con escamas de color ocre claro con ligera alternancia de escamas algo más oscuras. Tégulas recubiertas de las mismas escamas. Abdomen recubierto de las mismas escamas que el tórax. Alas anteriores sensiblemente rectangulares, bien desarrolladas con el ápice levemente redondeado. Margen costal (externo) levemente cóncavo. Termen con una fuerte inclinación del ápice al ángulo dorsal. El color de fondo de las alas delanteras es ocre oscuro, uniforme. Presenta una característica mancha circular y oscura en los interespacios V₄-V₅ de la zona postdiscal, justo al borde de la celda. También presenta tres manchas menos marcadas en el borde costal, junto al ápice, en los interespacios V₁₀, V₁₁ y V₁₂. Entre los interespacios V₁ y V₂, justo debajo de la celda, se observan varias máculas oscuras que forman un cordón interrumpido de escamas marrón oscuro. Finalmente se observa una línea de escamas oscuras en la zona marginal de ambas alas delanteras. Las fimbrias, bien desarrolladas, son de color ocre claro. Las alas posteriores son elípticas y apuntadas fuertemente hacia el ápice, sin ángulo anal. Son de color ocre uniforme, ligeramente más claro que las delanteras, sin manchas. Las fimbrias, de gran longitud, son también de color ocre claro uniforme.

Genitalia de la hembra (fig. 22): Con el 8º y 9º segmentos prácticamente soldados entre sí, sin espacio entre ellos, predominando el 8º segmento, de gran tamaño, fuertemente esclerotizado y con gran desarrollo hasta el punto que invade el espacio del 9º segmento en su parte posterior, quedando el 9º segmento incluido en su interior, donde se aprecian unas papilas anales bien desarrolladas. Apófisis posteriores largas, y anteriores cortas, pero debido a la estructura del 8º segmento, ya comentado, sus longitudes coinciden. En el 8º segmento, la placa postvaginalis presenta sendos lobulos cubierto de pequeñas microespinas. El ostium es circular, muy esclerotizado en sus bordes. Ductus bursae membranoso, cilíndrico y delgado, de corto recorrido. Bursa esférica y membranosa, sin signum, de gran volumen, aunque no supera la longitud de las apófisis.

Biología: Desconocida.

Distribución: Esta especie es endémica de España.

Detalles: Sólo se conocen dos machos procedentes de la provincia de Granada (ARNSCHEID & WEIDLICH, 2017) y ahora ampliamos su distribución hasta la provincia de Cádiz, lo que nos indica que la especie podría distribuirse por el sur de España.

YPONOMEUTIDAE

Paraswammerdamia kitamurae Gastón & Vives, sp. n.

Material estudiado: Holotipo, 1 ♀, ESPAÑA, ALMERÍA, Sierra de Gádor, a 2.020 m, 31-VII-2019, J. Gastón leg., prep. genit. 7914JG, depositado en el Museo Nacional de Ciencias Naturales, en Madrid (MNCN). Paratipo, 1 ♀, ALMERÍA, Sierra de Gádor, a 2.020 m, 31-VII-2019, J. Gastón leg. y coll., prep. genit. 7921JG.

Descripción del macho: Desconocido.

Descripción de la hembra (fig. 2): Envergadura, 13,5 mm, (n = 2). Cabeza bien desarrollada con pelos escamiformes blancos. Palpos labiales cortos y rectos. Antenas filiformes recubiertas de pequeñas cerdas de color gris oscuro rematadas en blanco. Tórax con escamas de color gris ocráceo claro uniforme y tégulas recubiertas de las mismas escamas. Abdomen recubierto de las mismas escamas que el tórax. Alas anteriores estrechas y alargadas con el termen redondeado y algo puntiagudo, lo que hace inapreciable el ápice. Margen costal (externo) levemente cóncavo. El color de fondo de las alas delanteras es gris claro salpicado de multitud de pequeñas escamas negras que lo oscurecen a primera vista. Presenta una apreciable, aunque difusa, mancha de escamas negras en el extremo exterior de la celda, lo mismo que otra, menos apreciable junto al margen interno (dorsal). En la zona postdiscal presenta una serie de tres manchitas oscuras en forma triangular, dos de ellas situadas en los márgenes costal y dorsal, y la tercera junto al termen, casi en la zona marginal. Esta se remata en su extremo con una fina línea de escamas oscuras en la base de las fimbrias, que son de color gris claro rematadas en negro. Las alas posteriores son estrechas y apuntadas fuertemente hacia el ápice, sin ángulo anal. Son de color gris claro uniforme, sin manchas. Las fimbrias, de gran longitud son también de color gris claro uniforme.

Genitalia de la hembra (fig. 23): 8º y 9º segmentos de gran tamaño en comparación con el resto de la estructura. Papilas anales bien desarrolladas con apófisis posteriores largos superando ligeramente el borde anterior del 8º segmento. Este presenta una geometría característica del género en la lamella postvaginalis, muy esclerotizada, con sendos lóbulos anchos y cortos de extremo redondeado recubiertos de pelos bien visibles. El borde anterior del 8º segmento presenta una apreciable y profunda entrada dirigida hacia la parte posterior, altamente esclerotizada que rodea al ostium. Las apófisis anteriores son de menor tamaño que las posteriores, presentado en su raíz una clara bifurcación; por un lado su conexión con los lóbulos de la placa postvaginalis, y por el otro un remate esclerotizado que llega hasta la parte superior del segmento. El ductus bursae es cilíndrico y membranoso. La bursa, ovoidal, es también membranosa y no presenta signum.

Biología: No se conocen los estados inmaduros ni las plantas nutricias de las orugas. Los imagos se capturaron en la parte superior de la ladera sur de la Sierra de Gádor, en el piso bioclimático mesomediterráneo (RIVAS-MARTÍNEZ, 1987) y a una altitud aproximada de 2.020 metros sobre el nivel del mar. Por los datos de que disponemos hasta la fecha, la especie vuela únicamente en una generación durante el mes de julio.

Distribución: Únicamente se conoce la especie de la localidad típica, Sierra de Gádor (Almería).

Detalles: Siguiendo a VIVES MORENO (2014), debería colocarse detrás de Paraswammerdamia albicapitella (Scharfenberg, 1805, in Beschtein & Scharfenberg).

Etimología: Dedicamos esta nueva especie a Makiko Kitamura, nuera del primer autor.

OECOPHORIDAE

Metalampra Toll, 1956

Annls. zool. Warsz., 16(13): 178

Especie tipo: Oecophora cinnamomea Zeller, 1839. Isis von Oken, 1839(3): 192

Detalles: Este género, junto con la especie, resultan nuevos para la fauna de España y siguiendo a VIVES MORENO (2014), habría que colocarlos detrás del género Decantha Busck, 1908 (Proc. U. S. Nat. Mus., 35: 202).

Metalampra italica Baldizzone, 1977 (Figs. 3, 24)

Metalampra (Borkhausenia) italica Baldizzone, 1977. Entomologica, 13: 37, figs. 1, 3, 5,7, 9, 13

LT: Asti, Boschi di Valmanera, ITALIA

Material estudiado: 1 ♀, ESPAÑA, LÉRIDA, Valle de Arán, Lés, a 625 m, 2-VIII-2018, J. Gastón leg. y coll., prep. genit. 7941JG.

Biología: Según nuestros datos, la larva se alimenta de los hongos Lenzites betulinus (L.) Fr. (Polyporaceae) y Stereum hirsutum (L.) Fr., (Steraceae), que se encuentran sobre diferentes de Betulaceae, Corylaceae Fagaceae.

Distribución: Según nuestros datos la especie se distribuye por Alemania (GAEDIKE, 2010), Austria (HUEMER, 2013), Bélgica (DE PRINS & DE PRINS, 2014), Croacia, Países Bajos, Suiza (SELIGER & SCHREURS, 2013), Dinamarca (BUHL et al., 2015), Italia (BALDIZZONE, 1977), por lo tanto, la especie resulta nueva para España.

LYPUSIDAE

Para el estatus actual de la familia Lypusidae Herrich-Schäffer, 1857 (KorrespBl. zool.-min. Ver. Regensburg, 11: 58), se ha seguido a HEIKKILÄ & KAILA (2019) y dentro de la misma, hemos considerado dos subfamilias Lypusinae y Chimabachinae Heinemann, 1870 (Schmett. Dtl. Schweitz (2)2(1): 130).

Hemos estudiado el género Agnoea Walsingham, 1907 (Proc. U. S. Nat. Mus., 33(1567): 200. Especie tipo Blastobasis evanescens Walsingham, 1901), que tiene una distribución Paleártica y, actualmente, está dividido en dos subgéneros Agnoea,con diecisiete especies y Tubuliferodes Toll, 1956 (Ann. Zool. Warsawa, 16: 185), con tres especies (SINEV & LVOVSKY, 2014).

El género Agnoea fue originalmente incluido en los Blastobasidae (WALSINGHAM, 1907), después transferido a los Oecophoridae (FLETCHER, 1929 lo pasa a sinonimia del género Borkhausenia Hübner, [1825] 1816) y últimamente a los Lypusidae (SINEV, 2014), que es lo que seguimos.

Las especies que actualmente se incluyen en el género Agnoea, han sido situadas en otros géneros a lo largo del tiempo y que han pasado a considerarse sinonimias del mismo, a saber: Pseudatemelia Rebel, 1910 (Verh. zool.-bot. Ges. Wien, 60: 29, especie tipo Pseudatemelia aeneella Rebel, 1910, por monotipia); Tubulifera Spuler, 1910 (Schmett. Eur., .: 345, especie tipo Tinea flavifrontella [Denis & Schiffermüller], 1775, por monotipia, es una homonimia de Tubulifera Zopf, 1885 in Schenk, (Protozooa), Handb. Botanik, .(2): 173); Tubuliferola Strand, 1917 (Int. ent. Z., 10: 137, especie tipo Tinea flavifrontella [Denis & Schiffermüller], 1775, por monotipia, nombre de reemplazo para Tubulifera Spuler, 1910) y Tubuliferodes Toll, 1956 (Annls zool., Warsz., 16: 185, especie tipo Tubuliferola josephinae Toll, 1956, por monotipia) que consideramos como un subgénero válido ([DENIS & SCHIFFERMÜLLER], 1775; DOUBLEDAY, 1859; STAUDINGER, 1859; REBEL, 1900; TOLL, 1956; JÄCKH, 1959, 1972; VIVES MORENO, 1986; CORLEY, 2014).

El género Agnoea, está ampliamente representado en la Península Ibérica (VIVES MORENO, 2014, con modificaciones) y actualmente con once especies presentes en España (E.) (Agnoea (Agnoea) nonscriptella Corley, 2014, se ha citado por primera vez para España (LASTUVKA & LASTUVKA, 2020) y cinco en Portugal (P.), a saber:

(E.) Agnoea (Agnoea) flavifrontella ([Denis & Schiffermüller], 1775). Ank. syst. Wienergegend: 143

(E.) Agnoea (Agnoea) subochrella (Doubleday, (1859). Syn. List Brit. Butterflies & Moths: 31

(E.P.) Agnoea (Agnoea) nonscriptella Corley, 2014. Entomologist’s Rec. J. Var., 126: 242

(E.P.) Agnoea (Agnoea) filiella (Staudinger, 1859). Stett.ent. Ztg., 20: 247

(E.) Agnoea (Agnoea) detrimentella (Staudinger, 1859). Stett. ent. Ztg., 20: 247

(E.P.) Agnoea (Agnoea) amparoella (Vives, 1986). SHILAP Revta. lepid., 13(52): 254-255

(E.P.) Agnoea (Agnoea) xanthosoma (Rebel, 1900). Dt. ent. Ztschr. Iris, 13: 174

(E.) Agnoea (Agnoea) emarella Gastón & Vives, sp. n.

(E.) Agnoea (Agnoea) lvovskyi Gastón & Vives, sp. n.

(E.) Agnoea (Tubeliferodes) josephinae (Toll, 1956). Annls zool., Warsz.,16(13): 185

En este trabajo descubrimos dos nuevas especies para la fauna de España, lo que representa un aumento del 25,00% y llegado a este punto, podríamos considerar que la Península Ibérica podría ser el punto de origen de este género, ya que posee el 50,00% de todas las especies conocidas, incluyendo las nuevas descritas a continuación.

Agnoea (Agnoea) emarella Gastón & Vives, sp. n.

Material estudiado: Holotipo, 1 ♂, ESPAÑA, TERUEL, Torrecilla del Rebollar, a 1.200 m, 25-VI1999, J. Gastón leg., prep. genit. 7772JG, depositado en el Museo Nacional de Ciencias Naturales, en Madrid (MNCN). Paratipos (4 ♂♂, 7 ♀♀); BURGOS, Cebrecos, a 980 m, 1 ♀, 18-VI-2018, Tx. Revilla leg. y coll., prep. genit. 7907JG; GUADALAJARA, Embid, a 1.050 m, 1 ♂, 31-V-2019, J. Gastón leg. y coll., prep. genit. 7767JG; Idem, 3 ♂♂, Tx. Revilla leg. y coll., prep. genit. 7902JG, 7903JG y 7904JG; TERUEL: Torrecilla del Rebollar, a 1.200 m, 1 ♀, 25-VI-1999, J. Gastón leg. y coll.; Idem, prep. genit. 7785JG; ZARAGOZA: Torralba de los Frailes, a 1.050 m, 1 ♀, 14-VI-1997, J. Gastón leg. y coll., prep. genit. 7787JG; Idem, 11-VI-1999, J. Gastón leg. y coll., prep. genit. 7788JG; Aguarón, a 750 m, 1♀, 13-VI-1998, J. Gastón leg. y coll., prep. genit. 7768JG; Idem, prep. genit. 7784JG.

Descripción del macho (fig. 4): Envergadura, 20 mm, (n = 5). Cabeza bien desarrollada y con pelos escamiformes grises claros y compactos en la frente y amarillos pajizos y más desordenados en la zona alta del epicráneo en forma de penacho. Palpos labiales cortos, ligeramente curvados en su extremo hacia arriba y recubiertos de pelos escamiformes de color gris oscuro. Antenas filiformes recubiertas de pequeñas cerdas de color ocre oscuro, con escapo corto. Tórax recubierto de escamas de color gris oscuro uniforme con tégulas recubiertas de las mismas escamas salteadas de alguna de color gris claro. Abdomen recubierto de las mismas escamas que el tórax. Alas anteriores con una geometría típica del género, con la costa ligeramente convexa, sobre todo en su parte basal junto al tórax y también junto al ápice que es fuertemente apuntado. Margen externo muy angulado, tanto que se confunde con el margen interno. El margen interno también presenta una ligera curvatura, en este caso cóncava. El color de fondo de las alas delanteras es gris muy oscuro y uniforme, presentando un leve oscurecimiento algo mayor en la zona basal y posdiscal. Es tan oscuro el color gris de las escamas de las alas delanteras que apenas se perciben tres manchas negras conspicuas situadas al tresbolillo, dos en la zona discal y una en la zona posdiscal. Las fimbrias son de color gris claro con una leve franja de color algo más claro en su parte central. Las alas posteriores son de color gris claro, sin manchas. Las fimbrias son iguales a las de las alas anteriores.

Genitalia del macho (fig. 14): Uncus piramidal apuntado con el extremo redondeado. Gnathos característico del género provisto de una estructura que une el extremo de ambos brazos compuesta por infinidad de celdillas y pelos interpuestos lo que le confieren una textura y una imagen semejante a una esponja semicircular de casi el ancho del tegumen. Las valvas, cortas y anchas son casi rectangulares, presentando un cucullus vertical que se confunde en su extremo inferior con el sacculus. Es destacable reseñar la existencia de una estructura situada en el interior del vinculum que enlaza la transtilla superior y la juxta inferior. Tiene la forma de dos letras C invertidas con sendos lóbulos en su parte superior rematados con infinidad de pequeños pelos. El aedeagus es muy corto y voluminoso con el extremo apuntado.

Descripción de la hembra (fig. 5): Envergadura, 18,33 mm, (n = 6). La morfología de las hembras no difiere esencialmente de la de los machos. Las principales estriban en los palpos, que en el caso de las hembras se encuentran tapizados de pelos escamiformes de color ocre claro y no de color gris oscuro. En la cabeza también presentan diferencias, con la frente recubierta de escamas de color ocre claro y no grises. Las alas son morfológicamente similares a las de los machos, aunque por lo general presentan un tono de gris más claro que en los machos, lo que hace más visibles las tres manchas descritas para estos últimos.

Genitalia de la hembra (fig. 25): Papilas anales de tamaño medio, poco esclerotizadas. Apófisis posteriores bien desarrolladas alcanzando el borde inferior esclerotizado del 8º segmento. Este, es alargado y membranoso en su parte superior y bien esclerotizado en su tercio inferior, presentando en el esternito una placa más esclerotizada que el resto con base horizontal, desde donde surgen las apófisis anteriores, que son de pequeño tamaño. El ostium es membranoso, lo mismo que el antrum hasta el colliculum, algo más voluminoso que el ductus que nace de su parte inferior, que también es membranoso y alargado hasta su entronque con la bursa. La bursa es membranosa con forma de maza, (similar a la cabeza del extremo de un palo de golf). Dispone en uno de sus extremos de un signum muy esclerotizado de tamaño medio de forma sensiblemente rectangular con sus extremos horizontales ligeramente apuntados y cubierto parcialmente de gruesas espinas.

Biología: No se conocen los estados inmaduros ni las plantas que sustentan a las orugas. Por los datos de que disponemos, hemos comprobado que vuela únicamente en una generación que se extiende desde finales de mayo y durante todo el mes de junio.

Distribución: La especie se ha localizado hasta la fecha en la encrucijada de las provincias de Zaragoza (Sierra de Vícor), Teruel (Sierra de Cucalón) y Guadalajara (Paramera de Molina), en el Sistema Ibérico turolense dentro del piso bioclimático supramediterráneo (RIVAS-MARTÍNEZ, 1987).

Detalles: Siguiendo a VIVES MORENO (2014), debería colocarse detrás de Agnoea (Agnoea) xanthosoma (Rebel, 1900)

Etimología: Dedicamos esta nueva especie a Ema Gastón Kitamura, tercera nieta del primer autor.

Agnoea (Agnoea) lvovskyi Gastón & Vives, sp. n.

Material estudiado: Holotipo, 1 ♂, ESPAÑA, ALMERÍA, Rambla de Cueva Negra, Mojácar, a 55 m, 18-IV-2018, J. Gastón leg. prep. genit. 7766JG, depositado en el Museo Nacional de Ciencias Naturales, en Madrid (MNCN). Paratipos (3 ♂♂); ALMERÍA, Rambla de Cueva Negra, Mojácar, a 55 m, 1 ♂, 18-IV-2018, J. Gastón leg. y coll., prep. genit. 7766JG; Idem, 2 ♂♂, Tx. Revilla leg. y coll., prep. genit. 7900JG y 7901JG.

Descripción del macho (fig. 6): Envergadura, 17,5 mm, (n = 4). Cabeza bien desarrollada y con pelos escamiformes ocre claros y compactos en la frente y ocre amarillento y más desordenados en la zona alta del epicráneo en forma de penacho. Palpos labiales cortos, ligeramente curvados en su extremo hacia arriba y recubiertos de pelos escamiformes de color ocre. Antenas filiformes recubiertas de pequeñas cerdas de color ocre en la base y grises en el extremo. Escapo pequeño. Tórax recubierto de escamas de color gris oscuro uniforme lo mismo que las tégulas. Abdomen recubierto de las mismas escamas que el tórax. Alas anteriores con una geometría típica del género, con la costa ligeramente convexa, sobre todo en su parte basal junto al tórax y también junto al ápice que es fuertemente apuntado. Margen externo muy angulado, tanto que se confunde con el margen interno. El margen interno también presenta una ligera curvatura, en este caso cóncava. El color de fondo de las alas delanteras es gris muy oscuro y uniforme. En los ejemplares mejor conservados se aprecia con dificultad una leve mancha negra en la zona discal, que se hace imperceptible en los ejemplares algo volados. Las fimbrias son de color gris oscuro con una leve franja de color algo más claro en su base. Las alas posteriores son de color gris claro, sin manchas.

Genitalia del macho (fig. 15): Uncus piramidal apuntado, con el extremo redondeado. Gnathos como el resto del género, con los brazos poco acusados y provisto en su extremo de una estructura compuesta por infinidad de celdillas y pelos interpuestos lo que le confieren (como el resto de las especies del género) una textura y una imagen semejante a una esponja de geometría ovoidal y de un tamaño igual a la mitad de la anchura del tegumen. Las valvas, cortas y muy anchas en su base son triangulares, presentando un ápex apuntado y redondeado. En su base se aprecian sendas estructuras con forma de V muy abierta y algo más esclerotizadas que el resto de la valva. El sacculus, ligeramente esclerotizado, presenta un pequeño quiebro en su parte media, detalle más acusado en unos ejemplares que en otros, pero siempre presente. Saccus sumamente corto y redondeado. El aedeagus es muy corto y voluminoso con el extremo ligeramente apuntado.

Descripción de la hembra: Desconocida.

Biología: No se conocen los estados inmaduros ni las plantas que sustentan a las orugas. Los imagos se capturaron al sur de Mojácar, en la Rambla de Cueva Negra, en el piso bioclimático termomediterráneo (RIVAS-MARTÍNEZ, 1987), y a una altitud aproximada de 55 m sobre el nivel del mar. Por los datos de que disponemos hasta la fecha, hemos comprobado que vuela únicamente en una generación durante el mes de mayo.

Distribución: Únicamente se conoce la especie de la localidad típica, Mojácar en la provincia de Almería.

Detalles: Siguiendo a VIVES MORENO (2014), debería colocarse detrás de Agnoea (Agnoea) emarella Gastón & Vives, sp. n.

Etimología: Dedicamos esta nueva especie a nuestro estimado colega el Dr. Alexander L. Lvovsky, que siempre ha estado en disposición de ayudarnos en cuantas consultas tuvimos que realizarle, tanto personalmente (durante la visita del segundo autor al Instituto de Zoología, de la Academia Rusa de Ciencias en San Petersburgo, Rusia), como epistolarmente.

ELACHISTIDAE

Elachista atricomella Stainton, 1849 (Figs. 7, 16)

Elachista atricomella Stainton, 1849. Syst. Cat. Br. Tineidae & Pterophoridae: 25

LT: [GRAN BRETAÑA]

?Microsetia obsoletella Stephens, 1834. Ill. Br. Ent. (Haust.), 4: 264

LT: Ripley, GRAN BRETAÑA

Microsetia exiguella sensu Stephens, 1834. Ill. Br. Ent. (Haust.), 4: 264

Elachista alienella Stainton, 1851. Suppl. Cat. Br. Tineidae & Pterophoridae, App. A: 9

LT: Lewishan [Londres], GRAN BRETAÑA

Elachista extensella Stainton, 1851. Suppl. Cat. Br. Tineidae & Pterophoridae, App. A: 26

LT: [GRAN BRETAÑA]

Elachista zetterstedtii Wallengren, 1852. Ofvers. K. VetenskAkad. Förh., 9: 219

LT: Trolle-Ljungby, SUECIA

Elachista holdenella Stainton, 1854. Ins. Br. Lepid.: 252

LT: Londres, GRAN BRETAÑA

Elachista helvetica Frey, 1856. Die Tineen und Pterophoren der Schweiz: 289

LT: Zürichs [Zurich], SUIZA

Elachista longipennis Frey, 1885. Stettin. ent. Ztg., 46(2-13): 102

LT: Wallis [Valais], SUIZA

Material estudiado: 1 ♂, ESPAÑA, LÉRIDA, Valle de Arán, Aiguamoix, a 1.700 m, 5-VII-2019, J. Gastón leg. y coll., prep. genit. 7948JG.

Biología: Según nuestros datos, la larva se alimenta de diferentes especies de Carex sp. (Cyperaceae), Milium sp. . Melica sp. (Poaceae), los adultos vuelan de mayo a septiembre en una sola generación (TRAUGOTT-OLSEN & SCHMIDT-NIELSEN, 1977; EMMET, 1996).

Distribución: Según nuestra información, se distribuye por casi toda Europa, incluido el Reino Unido; esta especie ya era conocida de Portugal, concretamente de Beira Litoral (CORLEY et al., 2007), por lo que resulta la primera cita para España peninsular.

COLEOPHORIDAE

Coleophora texanella Chambers, 1878 (Figs. 8, 26)

Coleophora texanella Chambers, 1878. U. S. Geol. Surv. Bull., 4: 93

LT: Belfrage, Texas, EE.UU.

(= Coleophora vagans Walsingham, 1907. Proc. U. S. nat. Mus., 33: 217

LT: New York, EE.UU.

(= Coleophora coxi Baldizzone & van der Wolf, 2007. SHILAP Revta. lepid.,35(137): 91, figs. 1-9

LT: Catania Fondachello, Sicilia, ITALIA

Material estudiado: 2 ♀♀, ESPAÑA, GRANADA, La Bernardilla, a 100 m, 1-X-2018, J. Gastón leg. y coll., prep. genit. 7920JG.

Biología: Según nuestros datos, la larva se alimenta de Portulaca oleracea L. (Portulacaceae) y los adultos vuelan en dos generaciones, la primera de mayo a junio y la segunda de septiembre a octubre (BALDIZZONE, 2019).

Distribución: Según nuestra información, se distribuye por EE.UU., España (Baleares), Francia, Grecia, Italia, Sicilia, Cerdeña, Croacia, Macedonia, Bulgaria y Creta. La especie ya estaba citada de la isla de Menorca (Baleares) (WALLHONRAT et al., 2010), por lo que resulta la primera cita para España peninsular.

Detalles: Las sinonimias fueron establecidas por LANDRY et al. (2013).

Coleophora lusciniaepennella (Treitschke, 1833, in Ochsenheimer) (Figs. 9, 17)

Ornix lusciniaepennella Treitschke, 1833, in Ochsenheimer. Europ. Schmett., 9(2): 213

LT: Wollmaise, ALEMANIA

(= Coleophora viminetella Zeller, 1849. Linn. ent., 4: 394

LT: Glogau [Glogów], POLONIA

(= Coleophora orbitella sensu Herrich-Schäffer, 1853: Samml. eur. Schmett., 5: pl. 87, fig. 670

(= Coleophora draghiaella Capuse, 1971. Alexanor, 7(3): 140, pl. 7, figs A-D, pl. 8, figs A-C

LT: Scheitnig, [Wroclaw], POLONIA

Material estudiado: 1 ♂, ESPAÑA, VIZCAYA, Gallartu (Orozko), a 300 m, 4-VI-2011, J. Gastón leg. y coll., prep. genit. 7917JG.

Biología: Siguiendo a EMMET (1996), la especie es univoltina encontrándose entre los meses de mayo hasta julio. La oruga se alimenta de diferentes especies de Salix sp. (Salicaceae) y ocasionalmente de Betula sp. (Betulaceae)

Distribución: Por los datos que disponemos, esta especie tiene una distribución Paleártica, casi por toda Europa, ocasional en el sur, llegando por Turquía hasta el Cáucaso y los Urales.

Detalles: Esta especie ya era conocida de Portugal, concretamente de Duoro Litoral (CORLEY et al., 2006), por lo que resulta nueva para España.

GELECHIIDAE

Stomopteryx hungaricella Gozmány, 1957 (Figs. 10, 18)

Stomopteryx hungaricella Gozmány, 1957. Acta zool. hung., 3: 111, fig. E

LT: Budakeszi, Hársbokorhegy, HUNGRÍA

Material estudiado: 1 ♂, ESPAÑA, ÁVILA, Arcones, Sierra de Arcones, a 1.212 m, 10-VII-2018, J. Gastón leg. y coll. 1 ♂, Idem, prep. genit. 7861JG

Biología: Se desconoce, pero siguiendo a GOZMÁNY (1957), la especie se encontró en un bosque con la asociación botánica Quercetum pubescentis, volando entre los meses de junio y agosto.

Distribución: Por los datos que disponemos, esta especie se distribuye por el centro sur y oeste de Europa, llegado hasta el Asia Menor (ELSNER et al., 1999).

Detalles: Siguiendo a VIVES MORENO (2014), habría que colocarla delante de Stomopteryx lusitaniella Corley & Karsholt, 2014, in Corley.

Monochroa felixi Gastón & Vives, sp. n.

Material estudiado: Holotipo, 1 ♂, ESPAÑA, ALMERÍA, Sierra de Gádor, a 2.020 m, 31-VII-2019, J. Gastón leg., prep. genit. 7844JG, depositado en el Museo Nacional de Ciencias Naturales, en Madrid (MNCN).

Descripción del macho (fig. 11): Envergadura, 9 mm, (n = 1). Cabeza pequeña con pelos escamiformes gris-plateados tanto en la frente como en la zona alta del epicráneo. Palpos labiales de mediado tamaño, ligeramente curvados hacia arriba y recubiertos de pelos gris claro. Antenas filiformes recubiertas de pequeñas cerdas de color gris claro. Escapo de mediado tamaño. Tórax y tégulas recubiertos de escamas de color uniforme gris plateado. Abdomen recubierto de escamas de color ocre oscuro. Alas anteriores extremadamente apuntadas en su ápice, de color uniforme ocre oscuro sin manchas apreciables. Alas posteriores de color uniforme ocre algo más claro que las anteriores, rectangulares (margen anal paralelo al margen interno), con el ápice sumamente puntiagudo.

Genitalia del macho (fig. 20): Uncus piramidal de extremo redondeado. Gnathos, ausente. Valva altamente esclerotizada, triangular, de base ancha y apuntada hacia su extremo con su margen externo ligeramente convexo, sobre todo en su extremo distal. Sacculus ancho, muy poco esclerotizado, manteniendo esa anchura en toda su longitud hasta el extremo, donde se redondea. El margen externo del sacculus es cóncavo y el interno convexo. Vinculum muy esclerotizado con cresta manifiesta en su parte inferior. Saccus bien desarrollado, potente, ancho y redondeado en su extremo inferior. Aedeagus de gran tamaño, cilíndrico y recto, ligeramente cónico en su parte distal donde se aprecia una zona más esclerotizada que el resto; vesica con la superficie granulada y compuesta con un grupo importante de micro-cornuti débilmente esclerotizadas.

Descripción de la hembra: Desconocida.

Biología: No se conocen los estados inmaduros ni las plantas que sustentan a las orugas. Los imagos se capturaron en la ladera sur de la Sierra de Gádor, en el piso bioclimático mesomediterráneo (RIVAS-MARTÍNEZ, 1987), y a una altitud aproximada de 2.020 m sobre el nivel del mar. Por los datos de que disponemos hasta la fecha, la especie vuela únicamente en una generación durante el mes de julio.

Distribución: Únicamente se conoce la especie de la localidad típica, Sierra de Gádor en la provincia de Almería (España).

Detalles: Siguiendo a VIVES MORENO (2014), debería colocarse detrás de Monochroa nomadella (Zeller, 1868).

Etimología: Dedicamos esta nueva especie al Dr. Félix Rodríguez de la Fuente, en el cuadragésimo aniversario de su trágico fallecimiento, como homenaje a su trayectoria de naturalista y gran divulgador científico.

Oxypteryx parahelotella (Nel, 1995) (Figs. 12, 21)

Eulamprotes parahelotella Nel, 1995. Alexanor, 19(1): 38-42, figs. 6-7, 10, 17

LT: Combe du Grand Barbeirol, Mont Ventoux, FRANCIA

(= Epithectis levisella Chrétien, 1930) ♀, in partim. Et. Lép. Comp., 19(1): 354

LT: Mrassine, MARRUECOS

Material estudiado: 2 ♂♂, ESPAÑA, BURGOS, La Vid, a 950 m, 29-IX-2019, J. Gastón leg. y coll., prep. genit. 7814JG y 7828JG; Briongos de Cervera, a 1.100 m, 1 ♂, 4-X-2019, J. Gastón leg. y coll., prep. genit. 7833JG

Biología: Se desconoce.

Distribución: Por los datos que disponemos, esta especie se encuentra en Francia, Marruecos y ahora también es nueva para España.

Detalles: Según HUEMER & KARSHOLT (2020), esta especie hay que incluirla en el género Oxypteryx Rebel, 1911, pasando a sinonimia del mismo, el género Eulamprotes Bradley, 1971. Siguiendo a VIVES MORENO (2014), habría que colocarla detrás de Oxypteryx helotella (Staudinger, 1859).

Caryocolum mazeli Huemer & Nel, 2005 (Figs. 13, 19)

Caryocolum mazeli Huemer & Nel, 2005. Bull. Soc. Ent. Fr., 110: 125, figs. 1a-b, 3, 5a-b

LT: Eyne, Pyrénées-Orientales, FRANCIA

Material estudiado: 1 ♂, ESPAÑA, LÉRIDA, Valle de Aiguamoix, a 1.500 m, Valle de Arán, 21VIII-1992, J. Gastón leg. y coll., prep. genit. 7870JG

Biología: Se desconoce, pero es posible que las orugas se alimenten de Caryophyllaceae de algunas especies del género Dianthus L. sp. y/o Petrorhagia (Ser.) Link., los adultos vuelan entre los meses de julio y agosto.

Distribución: Por los datos que disponemos, esta especie se encuentra localizada en Andorra, Francia y ahora en España.

Detalles: La especie ya era conocida de Andorra (VIVES MORENO, 2014), por lo que resulta nueva para la fauna de España.

Agradecimientos

No podemos terminar este trabajo sin agradecer la colaboración y la ayuda prestada por las siguientes personas e Instituciones: Dr. Giorgio Baldizzone (Asti, Italia), Dr. Alexander L. Lvovsky (San Petersburgo, Rusia), Francisco Javier Conde de Saro (Madrid, España), Txema Revilla (Vizcaya, España); Dra. Amparo Blay, Conservadora de Entomología, en el Museo Nacional de Ciencias Naturales (Madrid, España), que siempre ha estado dispuesta a ayudarnos en cuantas consultas la hemos solicitado y a las Direcciones Generales de Medio Ambiente por las autorizaciones concedidas allí donde se han desarrollado los muestreos.

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Notas de autor

*Autor para la correspondencia / Corresponding author fjgaston@yahoo.es