Cinco nuevas especies para la fauna de España y otras interesantes informaciones lepidopterológicas para España y Sudán (Insecta: Lepidoptera)

Five new species for the fauna of Spain and other interesting lepidopterological information for Spain and Sudan (Insecta: Lepidoptera)

Introducción

Como continuación al trabajo iniciado sobre la fauna de Lepidoptera de España (GASTÓN & VIVES MORENO, 2020a, 2020b), se proporcionan nuevos datos que amplían y enriquecen la biodiversidad de la fauna de España. El material estudiado procede igualmente de colecciones particulares y también de los fondos del Museo Nacional de Ciencias Naturales de Madrid, España (MNCN) abarcando varias familias como Yponomeutidae, Autostichidae, Gelechiidae, Tortricidae, Pyralidae y Noctuidae, nos ha permitido descubrir dos especies nuevas para la Ciencia, también hemos encontrado tres especies que son nuevas para la fauna de España y hemos podido describir el macho y la hembra de dos especies donde el correspondiente sexo era desconocido.

Hemos trabajado con material proporcionado por el Finnish Museum of Natural History, Helsinki, Finlandia (FMNH), donde hemos podido estudiar una pequeña serie de 10 ejemplares pertenecientes a la especie Turatia scioneura (Meyrick, 1929) de la que sólo se conocía el tipo depositado en The Natural History Museum, Londres, Reino Unido, que nos ha permitido estudiar la hembra, hasta ahora desconocida.

Material y métodos

El material utilizado para el estudio se ha obtenido mediante muestreos nocturnos y diurnos, con trampas de luz actínica distribuidas en los biotopos apropiados y disponiendo de las autorizaciones de las diferentes regiones afectadas. Para su identificación nos hemos basado en el examen comparativo de los caracteres morfológicos externos y, sobre todo, en el análisis de la estructura genital de los ejemplares. La preparación de los órganos genitales se ha efectuado siguiendo a ROBINSON (1976), con modificaciones. Se han utilizado los microscopios Leica DMLB, Leica MZAPO, NIKON Eclipse E400 y las cámaras digital Leica DFC550, NIKON D3100 y SONY α100 DSLR-A100K con objetivo AF 100 MACRO 1:2,8 (32), e igualmente para el retoque fotográfico, el programa de Adobe Photoshop ©.

Abreviaturas

AV Antonio Vives

JG Javier Gastón

ER Emili Requena

LT Locus typicus

MNCN Museo Nacional de Ciencias Naturales, Madrid, España

FMNH Finish Museum of Natural History, Helsinki, Finlandia

prep. gen. preparación de genitalia

ET Especie tipo del género

Resultados

YPONOMEUTIDAE

Paraswamerdamia kitamurae Gastón & Vives, 2020

Paraswamerdamia kitamurae Gastón & Vives, 2020. SHILAP Revta. lepid., 48(190): 309-310, figs 2, 23

LT: Sierra de Gádor, ALMERÍA, ESPAÑA

Material estudiado: ESPAÑA, ALMERÍA, Sierra de Gádor, a 2.020 m, 1 ♂, 31-VII-2019, J. Gastón leg., prep. gen. 7881JG; GRANADA, Sierra Nevada (accesos), a 2.100 m, 1 ♂, 10-VII-1994, J. Gastón leg. y coll., prep. gen. 8219JG.

Descripción del macho (fig. 1): Envergadura, 13,5 mm, (n = 2). La morfología externa no difiere de la de la hembra. Cabeza bien desarrollada con pelos escamiformes blancos. Palpos labiales cortos y rectos. Antenas filiformes recubiertas de pequeñas cerdas de color gris oscuro rematadas en blanco. Tórax con escamas de color gris ocráceo claro uniforme. Tégulas y abdomen recubiertos de las mismas escamas. Alas anteriores estrechas y alargadas con el termen redondeado y algo puntiagudo. Margen costal (externo) levemente cóncavo. El color de fondo es gris claro salpicado de multitud de pequeñas escamas oscuras que lo oscurecen a primera vista. Sobre las venas Sc (subcostal) y A₁, (anal), se distribuyen longitudinalmente desde la base del ala hasta el termen, una serie de minúsculos puntos oscuros que recorren las citadas venas. Presenta una apreciable, aunque difusa, mancha de escamas negras en el extremo exterior de la celda, lo mismo que otra, de mayor tamaño junto al margen interno (dorsal). En la zona postdiscal presenta una serie de tres manchitas oscuras en forma triangular, dos de ellas situadas en los márgenes costal y dorsal y la tercera junto al termen, casi en la zona marginal. Esta se remata en su extremo con una fina línea de escamas oscuras en la base de las fimbrias, que son de color gris claro rematadas en negro. Las alas posteriores son estrechas y apuntadas fuertemente hacia el ápice, sin ángulo anal. Son de color gris claro uniforme, sin manchas. Las fimbrias, de gran longitud son también de color gris claro uniforme.

Genitalia del macho (fig. 9): Tegumen ancho y corto. Uncus provisto de sendos socius largos y puntiagudos. Valvas cortas, anchas con apéndices costales alargados y estrechos situados en la base de la misma. La costa es recta hasta el pollex, algo puntiagudo. El pollex se curva hacia el margen interno de la valva. Sacculus característico del género, formando un apéndice con forma de cazo, esclerotizado en su extremo y despegado claramente de la valva. Saccus largo, de la misma longitud que las valvas, cilíndrico y rematado en su extremo por un abultamiento esférico altamente esclerotizado. Aedeagus cilíndrico, alargado y de una longitud similar al saccus, sin espinas.

Biología: No se conocen los estados inmaduros ni las plantas nutricias de las orugas. Los imagos se capturaron en cotas altas, por encima de 2.000 m, en las laderas orientadas al sur tanto de Sierra Nevada como en la Sierra de Gádor. Por los datos de que disponemos hasta la fecha, la especie vuela.

Distribución: Según nuestros datos, la especie se encuentra en las provincias españolas de Almería y Granada.

Detalles: Las diferencias en la genitalia del macho, con su especie más próxima Paraswamerdamia albicapitella (Scharfenberg, 1805) se localizan en el sacculus, que en esta especie es menor y rematado en punta (fig. 10), no en forma de cazo como en P. kitamurae. La principal diferencia de la genitalia de las hembras estriba en la forma y tamaño de la lamella postvaginalis (GASTON &VIVES, 2020).

AUTOSTICHIDAE

Symmoca mimetica Gozmány, 2008

Symmoca mimetica Gozmány, 2008, in Gaedike. Microlep. Pal., 13: 109-110, pl. 15, fig. 48, pl. 126, fig. 48

LT: Rebate, ALICANTE; Aledo, MURCIA, ESPAÑA

Material estudiado: ESPAÑA, ALMERÍA, Desierto de Tabernas, a 471 m, 1 ♀, 14-X-2006, M. Rondós leg., J. Gastón col., prep. gen. 1240ER.

Descripción de la hembra (fig. 2): Envergadura, 13,0 mm, (n = 1). La morfología no difiere esencialmente de la del macho. Antenas de color gris oscuro. Palpos labiales grises claros. Cabeza de color gris blanquecino, al igual que el tórax, pero este mezclado con pelos castaños y blancos grisáceos, sin tonalidades amarillentas. Alas anteriores con fondo de color beige algo oscuro; tres manchas costales uniformemente separadas comenzando desde la base del ala hasta la más cercana al termen que se sitúa aproximadamente a 1/3 del mismo. El punto de la celda desplazado ligeramente hacia la base, colocado en diagonal con el punto próximo al margen interno del ala. Los puntos del límite de las celdas fusionados. El arco formado por los puntos negros de la zona submarginal, está muy definido. Fimbrias blanquecinas. Alas posteriores de color gris ahumado uniforme con fimbrias de color blanco amarillento.

Genitalia de la hembra (fig. 15): Papilas anales bien desarrolladas. Apófisis posteriores de gran tamaño sobrepasando el VIII segmento. Apófisis anteriores de tamaño medio sobrepasando el ostium. VIII segmento trapezoidal, ancho y corto. Ostium cóncavo bordeado por un área labial de longitud doble a la anchura del ostium y muy esclerotizada. Antrum ancho, corto, levemente esclerotizado, con forma de copa y que presenta un brusco estrechamiento en el contacto con el ductus bursae. Ductus bursae de mucha longitud, cilíndrico o ligeramente trapezoidal, membranoso con tendencia a presentar en su parte posterior ligeros pliegues. Bursa ovoidal, membranosa con un signum de buen tamaño, muy visible, esclerotizado y de forma sensiblemente romboidal, de aristas casi lisas o con ligeras puntas poco apreciables.

Biología: No se conocen los estados inmaduros ni las plantas nutricias de las orugas.

Distribución: Según nuestros datos, la especie se distribuye por España y se encuentra en las provincias de Alicante, Murcia y Valencia (GOZMÁNY, 2008), y ahora también de Almería.

Detalles: La hembra de Symmoca mimetica Gozmány, 2008 puede confundirse con S. perobscurata Gozmány, 1957 y S. petrogenes Walsingham, 1907; se diferencia de la primera en el tamaño y forma del antrum (mayor en S. perobscurata), así como en los bordes dentados que presenta el signum de la bursa en esta especie. La diferencia con la segunda está en el signum, que es sumamente pequeño en S. petrogenes, tanto que pasa desapercibido (GOZMANY, 2008).

Turatia Amsel, 1942

Turatia Amsel, 1942. Veröff. dt. Kol. Übersee-Mus., 3: 234

ET: Holcopogon morettii Turati, 1926. Atti Soc. ital. Sci. Nat., 65: 70, fig. 38 [33]

= Ilionarsis Gozmány, 1959. Ann. hist.-nat. Mus. nat. hung., 51: 369

ET: Ilionarsis foeldvarii Gozmány, 1959. Ann. hist.-nat. Mus. nat. hung., 51: 369, fig. 5

Turatia scioneura (Meyrick, 1929)

Holcopogon scioneura Meyrick, 1929. Exot. Microlep., 3(17): 515

LT: Sinkat, SUDÁN

Material estudiado: SUDÁN, Sinkat, 9 11 (prep. gen. 2-14AV, 3-14AV), 1 ♀ (prep. gen. 1-14AV), 28-X-1962, S. Panelius leg. (FMNH).

Descripción de la hembra (fig. 3): No encontramos diferencias significativas con el macho, por lo que transcribimos la descripción original de MEYRICK (1929: 515): "♂, 19 mm. Head, thorax grey- whitish, face white. Palpi second joint pale grey, apical edge white, terminal joint white mixed pale grey. Antennae light grey, shortly ciliated. Fore-wings rather narrow (narrower than in bubulcella), apex obtuse, termen very obliquely rounded; 7 absent; whitish sprinkled light grey, appearing grey- whitish; an undefined median streak of grey suffusion from near base to ⁄, some fuscous sprinkling (sic) from this along fold; discal stigmata forming small elongate spots of blackish irroration, slight streaks of fuscous irroration along upper edge of cell between these, and along veins between this and costa: cilia whitish. Hindwings whitish-grey; cilia whitish. S_UDAN, Sinkat, October (H. B. Johnson): 1 ex.”.

Genitalia de la hembra (fig. 17): Papilas anales bien desarrolladas y ligeramente esclerotizadas. Apófisis posteriores de gran tamaño sobrepasando el VIII segmento y llegando hasta el ostium. Apófisis anteriores también de gran longitud sobrepasando el antrum hasta el colicolum del ductus bursae. EI VIII segmento es levemente trapezoidal, con sendas bandas verticales más esclerotizadas que el resto. Ostium en forma de V y placa postvaginalis en forma de V inversa con el vértice redondeado y muy esclerotizada. Antrum estrecho, cilíndrico, de mediano tamaño y altamente esclerotizado, rematado en su parte anterior, en el contacto con el ductus bursae, por un brusco estrechamiento algo deformado y retorcido. Ductus bursae de mediana longitud, cilíndrico o ligeramente trapezoidal, membranoso. Bursa ovoidal, membranosa con un signum de tamaño medio, muy visible, esclerotizado y de forma irregular absolutamente bordeada de espinas de diferente tamaño y forma.

Biología: No se conocen los estados inmaduros ni las plantas nutricias de las orugas. Los imagos se capturaron en el mes de octubre.

Distribución: Sólo se conoce de la localidad típica en Sinkat, Sudán.

Detalles: Esta especie fue originalmente incluida en el género Holcopogon Staudinger, 1859 (STAUDINGER, 1859), posteriormente en Ilionarsis Gozmány, 1959 (GOZMÁNY, 1959) y actualmente en Turatia Amsel, 1942 (GOZMÁNY, 2000), opinión que seguimos aquí.

GELECHIIDAE

Aproaerema ochrofasciella Toll, 1936 (fig. 4)

Aproaerema ochrofasciella Toll, 1936. Ann. Mus. zool. polon., 11: 408, pl. 49, figs 22-25

LT: Podolien, Kreis Zaleszczyki, Ubierzowa, POLONIA

Material estudiado: ESPAÑA, BURGOS, San Martín de Don, a 770 m, 1 ♀, 14-VIII-2020, J. Gastón leg., prep. gen. 8275JG (fig. 16).

Biología: Las larvas se alimentan de Astragalus glycyphyllos L. y Colutea arborescens L. (Fabaceae).

Distribución: Según nuestros datos la especie tiene una distribución Eurosiberiana (ELSNER et al., 1999), habiéndose citado posteriormente de Austria (BUCHNER, 2004), Francia (VARENNE & NEL, 2015), Italia (HUEMER, 2016), Suiza (SWISSLEPTEAM, 2010), por lo tanto, la especie resulta nueva para España.

Detalles: Siguiendo a VIVES MORENO (2014), debería colocarse detrás de Syncopacma sangiella (Stainton, 1863), actualmente Aproaerema sangiella (Stainton, 1863).

Megacraspedus sinevi Vives & Gastón, sp. n.

Material estudiado: Holotipo, 1 ♂, ESPAÑA, BURGOS, Castrobarto, 770 m, 27-VI-2020, J. Gastón leg., prep. gen. 8245JG, depositado en el Museo Nacional de Ciencias Naturales, en Madrid, España (MNCN).

Descripción del macho (fig. 5): Envergadura, 9,5 mm (n=1). Cabeza bien desarrollada con pelos escamiformes de color gris compactos en la frente y en la zona alta del epicráneo. Palpos labiales bien desarrollados, con el segundo segmento dirigido hacia el frente y bien cubierto, por su parte inferior, de una densa capa de pelos escamiformes de color blanquecino en la parte superior y gris en su parte inferior. El tercer segmento, que se encuentra recubierto de pelos escamiformes muy cortos de color blanquecino excepto en la punta, que son negros, es delgado, afilado y forma un ángulo de 120º con el segundo segmento y se dirige hacia la parte superior. Antenas filiformes recubiertas de pequeñas cerdas de color gris ocráceo muy oscuro. Tórax y tégulas recubiertas de escamas de color gris, iguales que la cabeza. Abdomen recubierto de las mismas escamas que el tórax. Los tres pares de patas, tanto el fémur como la tibia están recubiertos de pelos de color gris muy claro, casi blanco, aunque se observan ligeras salpicaduras de escamas de gris oscuro. Alas anteriores con el margen costal acusadamente convexo y el ápex sumamente apuntado. Margen externo angulado, tanto que se confunde con el margen interno. El color de fondo de las alas anteriores es gris, uniforme; destacan dos puntos negros (más bien dos pequeñas líneas) situadas a 1/3 y 2/3 desde la base del ala hacia el apex y colocadas sobre la vena CuA. (cubital). Las fimbrias están muy desarrolladas y son de color gris claro. Las alas posteriores son de color ocre-grisáceo uniforme y sus fimbrias del mismo color que las de las alas anteriores.

Genitalia del macho (fig. 11): Uncus cilíndrico, alargado, con el extremo redondeado. Gnathos muy esclerotizado, con forma de gancho de longitud menor que el uncus. Tegumen potente, rectangular. Valvas alargadas y delgadas, casi rectangulares, aunque de geometría variable que hace que su extremo (cucullus) se presente retorcido en las preparaciones. La valva, en su base, presenta un potente proceso costal giboso rematado en una gruesa punta formada por la agrupación y fusión de tejido base y espinas. Sacculus presente en forma de lóbulo. Vinculum con dos grandes procesos. Escleritos laterales cortos y gruesos. Saccus triangular y muy potente, con cresta eslerotizada central. Aedeagus cilíndrico con un coecum penis muy ensanchado, de forma globular y con una pequeña banda de espinas exteriores que separan la parte globular de la cilíndrica.

Hembra: Desconocida.

Biología: Desconocida.

Distribución: Sólo conocida de la localidad tipo.

Detalles: De momento mantenemos esta nueva especie en el género Megacraspedus Zeller, 1857 y siguiendo a VIVES MORENO (2014), debería de colocarse, provisionalmente, detrás de M. balnerariellus (Chretién, 1907).

Etimología: Dedicamos esta nueva especie a nuestro estimado colega el Dr. Sergej Sinev (San Petersburgo, Rusia), eminente especialista en la familia Gelechiidae.

TORTRICIDAE

Cochylimorpha erlebachi Huemer & Trematerra, 1997 (fig. 6)

Cochylimorpha erlebachi Huemer & Trematerra, 1997. Bool. Zool. Agr. Bachic., (2)29(1): 46, figs 1-5

LT: Verona Monte, ITALIA

Material estudiado: ESPAÑA, BURGOS, Castrobarto, a 770 m, 1 ♂, 26-VIII-2020, J. Gastón leg., prep. gen. 8177JG (fig. 12).

Biología: Desconocida. Periodo de vuelo desde julio hasta septiembre (HUEMER & TREMATERRA, 1997; RAZOWSKI, 2009).

Distribución: Según nuestros datos la especie se distribuye por el norte de Italia, (Trentino y Véneto), en alturas comprendidas entre los 300 y los 1.126 m. (PINZARI et al., 2006) y en Francia (Altos Alpes) (RAZOWSKI, 2002, 2009), por lo tanto, la especie resulta nueva para España.

Detalles: Siguiendo a VIVES MORENO (2014), debería colocarse detrás de Cochylimorpha hilarana (Herrich-Schäffer, 1851).

PYRALIDAE

Sudaniola asselbergsi Vives & Gastón, sp. n.

Material estudiado: Holotipo, 1 ♂, ESPAÑA, GRANADA, Albuñol, 27-VIII-1979, A. Vives leg., prep. gen. 1360AV, depositado en la colección A. Vives / Museo Nacional de Ciencias Naturales, en Madrid (MNCN). Paratipos: 6 ♂♂, 5 ♀♀: ALMERÍA, Retamar, a 25 m, 1 ♀, 20-X-2017, J, Gastón leg y coll.; GRANADA, Melicena, a 150 m, 1 ♀, 6-IX-2016, J. Gastón leg. y coll.; Idem, 1 ♀, 1 ♂, J, Gastón leg y coll., prep. gen. 5502JG y 5501JG; Barranco Escalate, a 90 m, 1 ♂, 19-V-2019, Tx. Revilla leg. y coll., prep. gen. 7322JG; Idem, 2 ♂♂, 10-IX-2020, J. Gastón leg. y coll., prep. gen. 7282JG y 7283JG; Vélez de Benaudalla, a 100 m, 1 ♀, 12-X-2018, Tx. Revilla leg. y coll., prep. gen. 7288JG; Idem, 1 ♂, 19-V-2019, Tx. Revilla leg. y coll., prep. gen. 7321JG; La Bernardilla, a 100 m, 1 ♀, 19-X-2017, J, Gastón leg y coll., prep. gen. 7370JG; MÁLAGA, Urbanización Punta Lara, Nerja, a 25 m, 1 ♂, 2-IX- 1994, Tx. Revilla leg. y coll. (REVILLA, 2015).

Descripción del macho (fig. 7): Envergadura, 13,10 mm (n=3). Cabeza bien desarrollada con pelos escamiformes de color ocre claro compactos en la frente y en la zona alta del epicráneo. Palpos labiales bien desarrollados, con el segundo y tercer segmentos dirigidos hacia el frente y bien cubiertos de una compacta capa de pelos escamiformes que son de color gris oscuro en el segundo segmento y blanco ocráceo en el tercer segmento, donde se alterna en su base y extremo con pelos de color gris oscuro. Antenas filiformes recubiertas de pequeñas cerdas de color gris ocráceo muy oscuro. Patagio donde destacan por dos filas de escamas bien desarrolladas; la más próxima al epicráneo está formada por escamas predominantemente de color rojizo asalmonado, y la más próxima al tórax de color ocre claro, casi blanco. Tórax y tégulas recubiertas de escamas de color predominante ocre claro, aunque entremezcladas con escamas de color rojizo asalmonado y alguna de color gris oscuro. Abdomen recubierto de escamas de color uniforme ocre claro. Los tres pares de patas, tanto el fémur como la tibia están recubiertos de pelos de color ocre muy claro, casi blanco, alternándose en franjas con pelos de color gris casi negro. Los tarsos están recubiertos de pelos gris oscuro, casi negros. Alas anteriores con el margen costal ligeramente convexo y el ápex suavemente redondeado. Margen externo casi vertical y poco redondeado. El color de fondo de las alas anteriores es gris uniforme, formado por la salpicadura de infinidad de escamas de color gris oscuro entremezcladas con escamas de color gris muy claro. Destacan tres franjas verticales (o casi) desde la base del ala hasta el termen. La más próxima a la base (situada en la zona basal), dispone de una pequeña zona de escamas negras, poco perceptibles, rematada hacia el exterior por estrecha banda blanca y otra de escamas rojizas en su extremo; la segunda franja, que es la más visible al ser muy ancha, se sitúa en la zona discal formando un ligero arco desde la costa hasta el margen interno del ala, y se compone de tres franjas de escamas de color blanco, negro y rojizo asalmonado (en el orden desde la base del ala al termen), recercadas por dos estrechas franjas de escamas negras en sus externos. Por último, la tercera franja situada en la zona postdiscal, es estrecha y zigzagueante, y se compone de dos líneas de escamas oscuras y paralelas. Destacan dos puntos negros (más bien dos pequeñas líneas) situados en la zona postdiscal entre los espacios de las venas V6 y V4. También se observan varios puntos negros en la zona marginal (unos cinco), justo en el límite con el termen. Las fimbrias de las alas anteriores son de color gris oscuro en su base y gris claro en su extremo. Las alas posteriores, con la geometría típica de la familia, son de color uniforme ocre-grisáceo muy claro, casi plateado, y sus fimbrias, bien desarrolladas, son de color gris muy claro.

Genitalia del macho (fig. 13): Uncus piramidal con el extremo redondeado. Gnathos formado por un grueso y esclerotizado apéndice recto con su extremo muy puntiagudo y casi tan largo como el uncus situado en la conjunción de dos lóbulos que forman el extremos de los brazos del gnathos. Valvas alargadas con la costa ligeramente convexa con un cordón marginal esclerotizado y levemente desviadas hacia arriba en su ápex con el cucullus redondeado. Sacculus ligeramente esclerotizado y ondulante ocupando el primer tercio de la valva. Juxta triangular, claramente bilobular, con dos potentes brazos delgados y divergentes estrechándose paulatinamente hacia sus extremos, que se rematan en una punta redondeada. Saccus de tamaño medio, triangular y apuntado. Aedeagus cilíndrico, de mediano tamaño con el coecum muy redondeado. Vesica forrada en su parte basal y central de infinidad de minúsculos granos muy esclerotizados. El octavo segmento del abdomen incluye una culcita muy característica, formada por dos brazos esclerotizados separados desde su base, que es ancha, y retorcidos hacia sus respectivos exteriores, adquiriendo la apariencia de la letra PI invertida.

Descripción de la hembra (fig. 8): Envergadura, 11,70 mm, (n = 4). La morfología de las hembras no difiere de la de los machos.

Genitalia de la hembra (fig. 18): Papilas anales de bien desarrolladas, muy anchas en su base y apuntadas en su extremo, que es redondeado. Apófisis posteriores de mediano tamaño, lo mismo que las anteriores. El octavo segmento dispone de una escotadura en el borde posterior. Ostium con forma de U muy abierta, remarcada por un cordón esclerotizado y un antrum campaniforme y membranoso. Ductus bursae corto, cilíndrico y membranoso, que se ensancha visiblemente antes de su contacto con la bursa, donde se aprecia con claridad una placa o signum alargada de bordes dentados. Bursa ovoidal, membranosa, con el ductus seminalis colocado en su parte posterior y recubierta en su pared interna y en uno de sus lados, de unos finos gránulos que comienzan en la mitad de la bursa y se extienden hasta el ductus, rodeando la placa descrita anteriormente.

Biología: Desconocida. No se conocen los estados inmaduros ni las plantas que sustentan a las orugas. Los imagos se capturaron en biotopos próximos a la costa mediterránea, fundamentalmente en ramblas kársticas formadas por calizas y dolomías en el piso bioclimático termomediterráneo, y a altitudes que oscilan desde el nivel del mar a 150 m. Por los datos de que disponemos, hemos comprobado que vuela al menos en dos generaciones; la primera y más abundante en mayo y la segunda en septiembre-octubre, aunque no descartamos que lo haga en una única generación desde mayo a octubre, ya que se han capturado escasos ejemplares en agosto.

Distribución: Conocida únicamente de las provincias de Almería, Granada y Málaga.

Detalles: Hasta ahora se consideraba que la población española de esta especie correspondía a Sudaniola remanella Roesler, 1973 (ROESLER, 1985), pero las diferencias en su genitalia demuestran la validez de este nuevo taxón. En los machos éstas radican, sobre todo, en la esclerotización de la culcita del 8º segmento (figs. 13b y 13c) además de la geometría de las valvas; en las hembras, en la ausencia de la placa esclerotizada que está presente en la base del ductus bursae de Sudaniola asselbergsi Vives & Gastón, sp. n. Siguiendo a VIVES MORENO (2014), debería colocarse donde está Sudaniola remanella Roesler, 1973, especie que debe de eliminarse de la fauna española.

Etimología: Dedicamos esta nueva especie a nuestro estimado colega Jan E. F. Asselbergs (GD Bergen op Zoom, Países Bajos), eminente especialista en Pyraloidea.

NOCTUIDAE

Spodoptera frugiperda (Smith, 1797)

Phalaena frugiperda Smith, 1797, in Smith & Abbot. Lep. Ins. Georgia, 2: 191, pl. 96

LT: Georgia, EE.UU.

= Laphygma macra Guenée, 1852, in Boisduval & Guenée. Hist. nat. Ins., Noct., 5: 157

LT: BRASIL, COLOMBIA, GUYANA

= Laphygma? inepta Walker, 1856. List Specs. Lep. Ins. Brit. Mus., 9: 190

LT: Santarem, BRASIL, VENEZUELA

= Prodenia signifera Walker, 1856. List Specs. Lep. Ins. Brit. Mus., 9: 193

LT: Georgia, EE.UU, VENEZUELA

= Prodenia plagiata Walker, 1856. List Specs Lep. Ins. Brit. Mus., 9: 194

LT: JAMAICA

= Prodenia autumnalis Riley, 1871. 3rd. Rep. Ins. Missouri: 109, figs. 45, 46a

LT: Missouri, EE.UU.

= Laphygma frugiperda fulvosa Riley, 1871. 3rd. Rep. Ins. Missouri: 117, fig. 46b

LT: Missouri, EE.UU.

= Laphygma frugiperda obscura Riley, 1871. 3rd. Rep. Ins. Missouri: 117, fig. 46c

LT: Missouri, EE.UU.

Material estudiado: ESPAÑA, TENERIFE, 2 ♂♂, 15-VII-2020, A. González leg., prep. gen. 61725AV (MNCN_Ent 265978) (fig. 14), capturados en trampas adhesivas tipo Delta en cartón engomado con feromonas específicas.

Biología: Es una especie polífaga y sus principales plantas nutricias son el maíz (Zea mays L.), la caña de azúcar (Saccharum officinarum L.), el sorgo (Sorghum bicolor (L.) Moench), el arroz (Oryza sativa L.) y en Brasil, el algodón (Gossypium hirsutum L.). Cuenta con una veintena de plantas huésped menores, entre las que se incluyen la cebolla (Allium cepa L.), el cacahuete (Arachis hypogaea L.), el pimiento (Capsicum annuum L.), el crisantemo de floristería (Dendranthema grandiflorum Ramat.), el clavel (Dianthus caryophyllus L.), el boniato (Ipomoea batatas (L.) Lam.), la alfalfa (Medicago sativa L.), el tabaco (Nicotiana tabacum L.), la judía (Phaseolus vulgaris L.), el tomate (Solanum lycopersicum L.), la berenjena (Solanum melongena L.) y otras especies de Brasicacea, Cucurbitacea y Poaceae.

Distribución: Por los datos que disponemos, esta especie se distribuye desde el sur de Canadá hasta el norte de Argentina y Chile (POGUE, 2002). En el año 2016 se detectó su presencia en el África subsahariana, concretamente en Nigeria, Santo Tomé y Príncipe (GOERGEN et al., 2016) ocupando toda la región Afrotropical y alcanzando Egipto en 2019 (VENNILA et al., 2019), Mauritania (EPPO, 2020a) e Israel (EPPO, 2020b). Se extiende por Asia llegando a la India en 2018 (REPALLE et al., 2020) y en 2019 ya se encuentra en el Yemen, Bangladesh, Myanmar, Sri Lanka, Tailandia y más recientemente en China, Corea del Sur, Japón (VENNILA et al., 2019), Pakistán (NAEEM-ULLAH et al., 2019), Laos (FAO, 2019), Filipinas (IPPC, 2019), Indonesia (EPPO, 2019) y Vietnam (USDA GAIN, 2019). Durante los primeros meses de 2020 ha sido capturada, en trampas, en las islas de Saibai y Erub en el Estrecho de Torres (IPPC, 2020) y en el norte de Australia continental (QUEENSLAND GOVERNMENT, 2020). Ahora se encuentra en las Islas Canarias, España.

Detalles: Es considerada como una de las más importantes plagas para la agricultura a nivel mundial. Siguiendo a VIVES MORENO (2014), esta especie hay colocarla detrás de S. cilium (Guenée, 1852, in Boisduval & Guenée). En la misma trampa pudimos encontrar y estudiar 3 ♂♂ de Leucania loreyi (Duponchel, 1827, in Godart & Duponchel), prep. gen. 61724 (MNCN_Ent 265977).

Agradecimientos

No podemos terminar este trabajo sin agradecer la colaboración y la ayuda prestada por las siguientes personas e Instituciones: al Dr. Ing. Pedro del Estal (Madrid, España), Dr. Lauri Kaila (Helsinki, Finlandia), Txema Revilla (Vizcaya, España) y a Emili Requena (Barcelona, España) por la aportación de material para su estudio; a Francisco Javier Conde de Saro, por su ayuda lingüística; a las Direcciones Generales de Medio Ambiente por las autorizaciones concedidas allí donde se han desarrollado los muestreos, en parte, dentro del Proyecto Científico de SHILAP y a la Dra. Amparo Blay, Conservadora de Entomología, en el Museo Nacional de Ciencias Naturales (Madrid, España), que siempre ha estado dispuesta a ayudarnos en cuantas consultas la hemos solicitado.

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Notas de autor

*Autor para la correspondencia / Corresponding author. E-mail: avives1954@outlook.es