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Un género y tres nuevas especies para España, con otras interesantes informaciones lepidopterológicas para la fauna española. Descripción de la hembra de Agnoea revillai Gastón & Vives, 2020 y creación de un nuevo género Paramegacraspedus Gastón & Vives, gen. n. (Insecta: Lepidoptera)
A genus and three new species for Spain with other additional interesting lepidopterology information for the Spanish fauna. Description of the females of Agnoea revillai Gastón & Vives, 2020 and creation of a new genus Paramegacraspedus Gastón & Vives, gen. n. (Insecta: Lepidoptera)
Un género y tres nuevas especies para España, con otras interesantes informaciones lepidopterológicas para la fauna española. Descripción de la hembra de Agnoea revillai Gastón & Vives, 2020 y creación de un nuevo género Paramegacraspedus Gastón & Vives, gen. n. (Insecta: Lepidoptera)
SHILAP Revista de lepidopterología, vol. 49, núm. 193, pp. 149-158, 2021
Sociedad Hispano-Luso-Americana de Lepidopterología
Recepción: 20 Enero 2021
Aprobación: 23 Febrero 2021
Publicación: 30 Marzo 2021
Resumen: Se describe un género nuevo Paramegacraspedus Gastón & Vives, gen. n. (Gelechiidae). Se citan, por primera vez para la fauna de España: Bucculatrix ratisbonensis (Stainton, 1861) (Bucculatricidae), Coleophora sattleri Baldizzone, 1995 (Coleophoridae) y Anacampsis trifoliella (Constant, 1890) (Gelechiidae). Se describe la hembra de Agnoea revillai Gastón & Vives, 2020 (Lypusidae). Se confirma la presencia de Megacraspedus dolosellus (Zeller, 1839) en España.
Palabras clave: Insecta, Lepidoptera, nuevo género, nuevas citas, España.
Abstract: A new genus Paramegacraspedus Gastón & Vives, gen. n. (Gelechiidae) is described. For the first time for the fauna of Spain: Bucculatrix ratisbonensis (Stainton, 1861) (Bucculatricidae), Coleophora sattleri Baldizzone, 1995 (Coleophoridae) y Anacampsis trifoliella (Constant, 1890) (Gelechiidae) are mentioned. The female of Agnoea revillai Gastón & Vives, 2020 (Lypusidae) is described. The presence of Megacraspedus dolosellus (Zeller 1839) is confirmed for Spain.
Keywords: Insecta, Lepidoptera, new genus, new mentions, Spain.
Introducción
Como continuación a los trabajos iniciados sobre la fauna de Lepidoptera de España (GASTÓN & VIVES MORENO, 2020a, 2020b; VIVES MORENO & GASTÓN, 2019, 2020), en el presente trabajo se proporcionan nuevos datos que amplían y enriquecen la biodiversidad de la fauna de España. Al igual que las otras ocasiones, el material estudiado procede de colecciones particulares y de los fondos del Museo Nacional de Ciencias Naturales de Madrid, España (MNCN) abarcando en este caso varias familias como Bucculatricidae, Lypusidae, Depressariidae, Coleophoridae y Gelechiidae.
En nuestro anterior trabajo (VIVES MORENO & GASTÓN, 2020), en la descripción del Gelechiidae Megacraspedus sinevi Vives & Gastón 2020, ya manteníamos las dudas sobre la inclusión de la nueva especie en dicho género, ahora, proponemos separarla definitivamente del género Megacraspedus Zeller, 1839 y crear uno nuevo.
Material y métodos
El material utilizado para el estudio se ha obtenido mediante muestreos nocturnos y diurnos, con trampas de luz actínica distribuidas en los biotopos apropiados y disponiendo de las autorizaciones de las diferentes regiones afectadas. Para su identificación nos hemos basado en el examen comparativo de los caracteres morfológicos externos y, sobre todo, en el análisis de la estructura genital de los ejemplares. La preparación de los órganos genitales se ha efectuado siguiendo a ROBINSON (1976), con modificaciones. Se han utilizado los microscopios Leica DMLB, Leica MZAPO, NIKON Eclipse E400 y las cámaras digital Leica DFC550, NIKON D3100 y SONY α 100 DSLR-A100K con objetivo AF 100 MACRO 1:2,8 (32), e igualmente para el retoque fotográfico, el programa de Adobe Photoshop ©.
Abreviaturas
AV Antonio Vives
BR Bent W. Rasmussen
comb. n. combinación nueva
gen. n. género nuevo
JG Javier Gastón
LT Locus typicus
MNCN Museo Nacional de Ciencias Naturales, Madrid, España
prep. gen. preparación de genitalia
Resultados
BUCCULATRICIDAE
Bucculatrix ratisbonensis Stainton, 1861 (fig. 1)
Bucculatrix ratisbonensis Stainton, 1861. Weekly Intel., 9: 168
LT: Ratisbon [Regensburg], ALEMANIA
Material estudiado: ESPAÑA, Teruel, Tramacastilla, a 1.265 m, 1 ♂, 19-VI-1993, J. Gastón leg., prep. gen. 8410JG (fig. 7).
Biología: Las larvas se alimentan de Asteraceae, concretamente de Artemisa campestris L. (STAINTON, 1861) y Artemisia absinthium L. (SEKSYAEVA, 1981).
Distribución: Según nuestros datos la especie se distribuye por el centro de Europa desde Francia e Italia, hasta la Rusia europea y Escandinavia, por lo tanto resulta nueva para España.
Detalles: Siguiendo a VIVES MORENO (2014), debería de colocarse detrás de Bucculatrix artemisiella Herrich-Schäffer, 1855.
LYPUSIDAE
Agnoea (Agnoea) revillai Gastón & Vives, 2020
Agnoea (Agnoea) revillai Gastón & Vives, 2020, SHILAP Revta. lepid., 48(191): 545-564
LT: El Ribero, Burgos, ESPAÑA
Material estudiado: 1 ♀, ESPAÑA, Burgos, El Ribero, 750 m, 22-VI-2020, J. Gastón leg., prep. gen. 8454JG.
Descripción de la hembra (fig. 2): Envergadura, 12 mm (n=1). No difiere del macho, por lo que nos remitimos a su descripción (VIVES MORENO & GASTÓN, 2020a). La única diferencia en su morfología externa con el macho (aparte de su menor tamaño), es la ausencia de las de dos manchas oculares casi negras alineadas en la zona discal y postdiscal de sus alas delanteras.
Genitalia de la hembra (fig. 10): Papilas anales bien desarrolladas y moderadamente esclerotizadas. Apófisis posteriores largas, superando el margen anterior del octavo segmento. Apófisis anteriores cortas, aproximadamente 1/3 de la longitud de las posteriores. Ostium y antrum membranosos, este último con forma de embudo alargado. Ductus bursae cilíndrico, estrecho, membranoso y de moderada longitud. Bursa membranosa esférica con un signum romboidal cubierto de cortas y gruesas espinas tanto en sus caras como en los bordes, muy esclerotizado y ubicado en la parte superior de la bursa.
Biología: Desconocida.
Distribución: Sólo conocida de la localidad tipo en España.
DEPRESSARIIDAE
Rosetea rosetella (Corley, 2018) (fig. 3)
Cacochroa rosetella Corley, 2018. SHILAP Revta. lepid., 46(181): 76, figs 1-3
LT: 2 Km. East of Ansião, BEIRA Litoral, PORTUGAL
Material estudiado: ESPAÑA, Burgos, Herrera, Ircío, 500 m, 1 ♀, 19-VIII-2018, J. Gastón leg. y coll., prep. gen. 8459JG (fig. 11); el cornutus del aedeagus del macho se encuentra alojado en el cuello superior de la bursa, (fig. 11b).
Biología: Se desconocen sus estados larvarios y las plantas que sustentan a las mismas.
Distribución: La especie tiene una distribución circummediterránea occidental (CORLEY & FERREIRA, 2019), que comprende Croacia, España, Francia, Grecia, Italia, Portugal y Argelia. Ya era conocida de Huelva, y ahora del norte de Burgos, por lo que sería la segunda cita para España, lo que nos hace pensar que pueda tener una amplia distribución por la Península Ibérica.
Detalles: Siguiendo a VIVES MORENO (2014), tanto el género como la especie, debería de colocarse detrás del género Cacochroa Heinemann, 1870.
COLEOPHORIDAE
Coleophora sattleri Baldizzone, 1995
Coleophora sattleri Baldizzone, 1995. SHILAP Revta. lepid., 23(89): 43, figs 2-3, 6-8
LT: Pic du Midi de Bigorre, FRANCIA
Material estudiado: ESPAÑA, Madrid, Cercedilla, 1 ♂, 28-VII-1957, R. Agenjo leg., prep. gen. 57656BR (fig. 8).
Biología: La larva se alimenta de Arenaria montana L. (Caryophyllaceae) (BALDIZZONE & CORLEY, 2013).
Distribución: Según nuestros datos la especie se distribuye por Francia (BALDIZZONE, 1995), Portugal (BALDIZZONE & CORLEY, 2013), por lo tanto, resulta nueva para España.
GELECHIIDAE
Anacampsis trifoliella (Constant, 1890) (fig. 4)
Tachyptilia trifoliella Constant, 1890. Bull. Soc. ent. Fr., (6) 10: 7, pl. 1, fig. 4
LT: Alpes du Dauphiné, FRANCIA
Material estudiado: ESPAÑA, LA Rioja, Castroviejo, a 950 m, 1 ♀, 16-VII-2017, J. Gastón leg., prep. gen. 8423JG (fig. 12).
Biología: Las larvas se alimentan de Trifolium repens L. (Leguminosae).
Distribución: Según nuestros datos la especie se distribuye por Francia y Suiza, por lo tanto, resulta nueva para España.
Detalles: CONSTANT in LABOULBÈNE (1889: CXXV), hace una primera descripción de la especie y posteriormente (CONSTANT, 1890: 7-8), realiza una segunda más detallada, fecha que se considera como válida. Siguiendo a VIVES MORENO (2014), debería de colocarse detrás Anacampsis hirsutella Constant, 1885.
Megacraspedus dolosellus (Zeller, 1839) (fig. 5)
Ypsolophus (Megacraspedus) dolosellus Zeller, 1839. Isis, 1839: 190
LT: Viena, AUSTRIA
= Ypsolophus separatellus Fischer von Röslerstamm, 1843. Abbild. Schmett.: 300, 302, pl. 100, figs 1a-d
LT: Viena, AUSTRIA
= Megacraspedus incertellus Rebel, 1930. Verhandl. zool.-bot. Ges. Wien, 80: (14)
LT: Alibotusch-Gebirge, BULGARIA
Material estudiado: ESPAÑA, Burgos, Herrera, Ircío, a 500 m, 1 ♂, 23-VII-1993, J. Gastón leg., prep. gen. 7669JG (fig. 9).
Biología: Las larvas se alimentan de diferentes especies de Poaceae como: Cynodon dactylon (L.) Pers., Elymus repens (L.) Gould, Lolium perenne L., Poa annua L. y Triticum aestivum L.
Distribución: Según nuestros datos la especie se distribuye por Europa llegando hasta el Asia Central. HUEMER & KARSHOLT (2018) consideran que está ausente de la Península Ibérica; con esta cita, confirmamos su presencia en España, si bien ya había sido citada de Cuenca y Teruel (SEEBOLD, 1898: 316) y Granada (CARADJA, 1920: 117).
Género Paramegacraspedus Gastón & Vives, gen. n.
Especie tipo: Megacraspedus sinevi Vives & Gastón, 2020
Diagnosis: Especie de pequeño tamaño. Cabeza bien desarrollada. Palpos labiales bien desarrollados, ligeramente curvado en tercer segmento hacia la parte superior. Antenas filiformes recubiertas de pequeñas cerdas. Tórax y tégulas recubiertas de escamas del mismo color que la cabeza. Abdomen recubierto de las mismas escamas que el tórax. Alas anteriores con el margen costal acusadamente convexo y el ápex sumamente apuntado. Margen externo angulado, tanto que se confunde con el margen interno. El color de fondo de las alas anteriores es uniforme o con leves máculas negras poco perceptibles. Las fimbrias están muy desarrolladas y son de color gris claro. Las alas posteriores son de color ocre-grisáceo uniforme y sus fimbrias del mismo color que las de las alas anteriores.
Genitalia del macho (fig. 13): Uncus cilíndrico, medianamente alargado, con el extremo redondeado. Gnathos muy esclerotizado, con forma de gancho. Tegumen potente, rectangular. Valvas alargadas y delgadas, casi rectangulares con un proceso costal situado en su base. Sacculus presente en forma de lóbulo. Saccus triangular y muy potente, con cresta esclerotizada central. Aedeagus (fig. 13a) corto, cilíndrico, con un coecum penis muy ensanchado, de forma globular y con una pequeña banda de espinas exteriores (fig. 13b) que separan la parte globular de la cilíndrica.
Genitalia de la hembra: Desconocida.
Detalles: Siguiendo a VIVES MORENO (2014), tanto el género como la especie, debería de colocarse detrás del género Megacraspedus Zeller, 1839.
Etimología: Se adopta en nombre de Paramegacraspedus Gastón & Vives, gen. n., por tratarse de un género situado “junto a” o “al margen de” Megacraspedus Zeller, 1839.
Paramegacraspedus sinevi (Vives & Gastón, 2020), comb. n. (fig. 6)
Megacraspedus sinevi Vives & Gastón, 2020. SHILAP Revta. lepid., 48(192): 721, figs 5, 11
LT: Castrobarto, Burgos, ESPAÑA
Material estudiado: ESPAÑA, Burgos, Castrobarto, 770 m, 1 ♂, 27-VI-2020, J. Gastón leg., prep. gen. 8245JG.
Hembra: Desconocida.
Biología: Desconocida.
Distribución: Sólo conocida de la localidad tipo.
Agradecimientos
No podemos terminar este trabajo sin agradecer la colaboración y la ayuda prestada por las siguientes personas e Instituciones: al Dr. Giorgio Baldizzone (Asti, Italia), Martin Corley (Oxfordshire, Reino Unido), Ole Karsholt (Copenhague, Dinamarca), Dr. Zdenek Lastuvka (Brno, República Checa), Dr. Peter Huemer (Innsbruck, Austria), Txema Revilla (Berango, España), Dr. Klaus Sattler (Londres, Reino Unido); a Francisco Javier Conde de Saro (Madrid, España), por su ayuda lingüística; a las Direcciones Generales de Medio Ambiente por las autorizaciones concedidas allí donde se han desarrollado los muestreos, en parte, dentro del Proyecto Científico de SHILAP y a la Dra. Amparo Blay, Conservadora de Entomología, en el Museo Nacional de Ciencias Naturales (Madrid, España), que siempre ha estado dispuesta a ayudarnos en cuantas consultas la hemos solicitado.
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Notas de autor
*Autor para la correspondencia / Corresponding authoravives1954@outlook.es